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Informações sobre os amarelos da videira - Existe um tratamento para os amarelos da videira

Informações sobre os amarelos da videira - Existe um tratamento para os amarelos da videira


Por: Jackie Carroll

Cultivar uvas é um trabalho de amor, mas termina em frustração quando, apesar de seus melhores esforços, as videiras amarelam e morrem. Neste artigo, você aprenderá a identificar e tratar a doença dos amarelos da videira.

O que é Grapevine Yellows?

Vários problemas levam ao amarelecimento das folhas da videira e alguns deles são reversíveis. Este artigo trata de um grupo específico de doenças chamadas amarelos da videira. É fatal, mas você pode impedi-lo antes que se espalhe por toda a sua vinha.

Minúsculos microorganismos chamados fitoplasma causam amarelos na videira. Essas pequenas bactérias, como criaturas, não têm parede celular e só podem existir dentro de uma célula vegetal. Quando as cigarrinhas e as cigarrinhas comem uma folha de uva infectada, o organismo se mistura com a saliva do inseto. Na próxima vez que o inseto morde uma folha de uva, ele passa a infecção.

Informações adicionais sobre os amarelos da videira

A doença dos amarelos da videira causa sintomas muito específicos que você não terá problemas para identificar:

  • As folhas das plantas infectadas revolvem-se de tal forma que assumem uma forma triangular.
  • Dicas de tiro morrem de volta.
  • A fruta em desenvolvimento fica marrom e murcha.
  • As folhas podem amarelar. Isso é especialmente verdadeiro em variedades de cores claras.
  • As folhas tornam-se coriáceas e quebram-se facilmente.

Você pode ver esses sintomas apenas em um broto, mas dentro de três anos toda a videira apresentará os sintomas e morrerá. É melhor remover as videiras infectadas para que não se tornem uma fonte de infecção para a alimentação de insetos.

Embora você possa identificar facilmente os sintomas, a doença só pode ser confirmada por exames laboratoriais. Se você gostaria de confirmar o diagnóstico, seu agente de extensão cooperativa pode dizer para onde enviar o material da planta para teste.

Tratamento para amarelos de videira

Não existe um tratamento para os amarelos da videira que reverta ou cure a doença. Em vez disso, concentre sua atenção na prevenção da propagação da doença. Comece livrando-se dos insetos que transmitem a doença - cigarrinhas e cigarrinhas.

Joaninhas, vespas parasitas e crisopídeos são inimigos naturais que podem ajudá-lo a mantê-los sob controle. Você pode encontrar inseticidas rotulados para uso contra cigarrinhas e cigarrinhas em um centro de jardinagem, mas tenha em mente que os inseticidas também reduzem o número de insetos benéficos. Seja qual for o método escolhido, você nunca pode eliminar completamente os insetos.

O fitoplasma responsável pela doença dos amarelos da videira tem muitos hospedeiros alternativos, incluindo árvores de madeira dura, árvores frutíferas, videiras e ervas daninhas. Os hospedeiros alternativos podem não apresentar quaisquer sintomas. É melhor plantar videiras a pelo menos 30 metros de uma área arborizada e manter o local livre de ervas daninhas.

Este artigo foi atualizado pela última vez em


Folhas de uva ficando marrons!

Minhas folhas de uva estão ficando marrons! Esta foi uma videira severamente negligenciada. Eu o cortei no início de fevereiro e parecia estar crescendo bem. Até que de repente as folhas começaram a ficar horríveis. Alguma ideia do que é isso e como combatê-lo?
Desde já, obrigado!

Acho que é uma doença, talvez um fungo, mas para ter certeza, eu levaria algumas amostras (bem lacradas, sacos zip-lock) para um escritório de extensão ou departamento de agricultura, se houver algum local para você.

Muito obrigado! Eu estava com medo disso :(. Já perdi uma árvore de damasco devido ao que acredito ser a praga do fogo. Este é o único aspecto da jardinagem que eu não tinha ideia ou como pode ser difícil de lidar.

Você sabe quanto pode custar algo assim?

Consultar qualquer um dos lugares que sugeri, ou mesmo um berçário de boa reputação, é gratuito.

Eles podem sugerir possíveis tratamentos, e estes custarão alguma coisa.
Muitas vezes, o tratamento pode incluir a melhoria da saúde da planta com fertilizante (pequeno custo, grande benefício), irrigação de imersão profunda (custa algum tempo e um pouco de água) e poda específica para a planta (sem custo, a menos que você contrate um especialista, mas qualquer um pode aprender o tempo e a técnica para podar várias plantas) e o tempo dessas coisas para minimizar doenças ou problemas com insetos.

Também pode haver alguns sprays que podem ser usados ​​na hora certa para evitar que isso aconteça no próximo ano. O spray pode ser caro ou barato, ou pode haver remédios caseiros simples que podem funcionar. Depende de qual é o problema real.

Você já descobriu o que era isso?

Para mim, não parece doença. As duas doenças foliares mais comuns nas uvas são o oídio em climas frios e úmidos e o oídio em climas quentes e secos, mas nenhuma das doenças se parece com isso.

Você aplicou alguma coisa à base de óleo nas folhas em um dia quente e ensolarado? ou até respingou água?

Que tal aplicar herbicidas nas proximidades ou no solo ao redor das uvas? O Arizona fica muito quente às vezes. pode ser uma queimadura de sol?

Esta mensagem foi editada em 19 de julho de 2013 às 07:38


O que é doença dos amarelos da videira: motivos para as folhas da videira ficarem amarelas - jardim

G.P. Martelli

Embora seis viróides tenham sido recuperados até agora de videiras (ver Tabela 3), (Sano et al., 1985 Flores et al., 1985 Semancik, Rivera-Bustamante e Goheen, 1987 Rezaian, Koltunow e Krake, 1988 Puchta, Ramm e Sanger , 1989 Semancik e Szychowski, 1990), quatro não são conhecidos por induzirem doenças. Esses viróides, isto é, o viróide de dublagem do lúpulo (HSVd), o viróide de exocortis cítrico (CEVd), o viróide australiano da videira (AGVd) e o viróide da videira - pepino (GVd-c), foram encontrados em vinhas sem sintomas ou com sintomas de diferentes vírus e / ou doenças semelhantes a vírus. A única doença para a qual uma etiologia viróide foi razoavelmente estabelecida é a doença do manchas amarelas.

Os agentes causais da doença do ponto amarelo são os viróides 1 e 2 do ponto amarelo da videira (GYSVd-1 e GYSVd-2), viróides com comprimentos de cadeia de 367 e 363 nucleotídeos, respectivamente (Koltunow e Rezaian, 1989).

DISTRIBUIÇÃO GEOGRÁFICA

GYSVds pode ter uma distribuição mundial. Eles foram encontrados em vinhas originárias de muitos países diferentes de todos os continentes (Semancik, Rivera-Bustamante e Goheen, 1987 Szychowski, Goheen e Semancik, 1988 Minafra, Martelli e Savino, 1990).

Nenhum hospedeiro natural é conhecido além das espécies de Vitis.

A mancha amarela é uma doença indescritível cuja expressão externa é condicionada por fatores climáticos e possivelmente varietais. Os sintomas, quando mostrados, consistem em algumas ou muitas manchas amarelas de cromo diminutas ou manchas espalhadas sobre parte ou toda a superfície da folha (Figuras 104 e 105) ou juntando-se ao longo das nervuras principais para dar um padrão de faixa de veias (Figura 106).

O bandeamento venoso induzido por GYSVd é muito semelhante, senão idêntico, aos sintomas de uma doença também conhecida pelo nome de bandamento venoso (Figura 107), que há muito tempo é considerado como parte do complexo de degeneração em folha de leque (Goheen e Hewitt, 1962 ) Embora a formação de faixas nas veias possa aparecer em videiras sem GFLV, ela está mais frequentemente associada a infecções por GFLV. Na verdade, foi sugerido que a presença de GFLV aumenta a expressão de GYSVd na forma de padrões de bandas de veias (Krake e Woodham, 1983). Um realce semelhante pode ocorrer em videiras simultaneamente infectadas pelo vírus do mosaico do cromo da videira (Figura 108). Ao contrário das descolorações amarelas induzidas por GFLV, os sintomas de manchas amarelas aparecem no auge do verão em um número limitado de folhas maduras e persistem pelo resto da estação de vegetação. Sintomas de manchas amarelas também podem aparecer simultaneamente com sintomas de outras doenças, como como, por exemplo, leafroll (Figura 109).

Nenhum vetor é conhecido. A disseminação natural ocorre por inoculação mecânica por meio de ferramentas de corte contaminadas na superfície durante as operações de manejo (poda e propagação) por transmissão de enxerto e por distribuição de material de propagação infectado. A ausência de sintomas na maioria das variedades de copa européias e em todos os porta-enxertos americanos facilita muito a disseminação inadvertida do viróide, tornando a dispersão do viróide virtualmente impossível de prevenir. Nenhum dos viróides da videira é conhecido por ser transmitido por sementes.

A detecção é baseada na observação de sintomas de campo. A pesquisa de sintomas (especialmente formação de faixas nas veias) é melhor feita no final do verão. Para detecção de doenças em locais onde os sintomas não se desenvolvem em condições de campo, um procedimento de venda: indexação pode ser usado. Estacas de videira recém-coletadas ou armazenadas a frio são colocadas em uma câmara de crescimento a 32 ° C sob iluminação contínua (tubos fluorescentes e lâmpadas incandescentes dando 10.000 lux ao nível da vegetação) e são deixadas para enraizar e crescer por quatro semanas (Mink e Parsons, 1975). Manchas cloróticas translúcidas se desenvolvem ao longo das principais veias e tecidos intervinais de videiras infectadas com GYSVd 10 a 20 dias após o início do crescimento.

IDENTIFICAÇÃO
Indexação por transmissão de enxerto

Os indicadores de manchas amarelas são os cultivares europeus Mataro e Mission. Os sintomas são semelhantes aos observados em videiras naturalmente infectadas no campo, mas são igualmente erráticos. Na maioria das condições de indexação, as respostas do indicador não são confiáveis. Se estacas de LN 33 inoculadas com botões de chip forem imediatamente colocadas em uma câmara de crescimento a 32 ° C por três semanas, em seguida, transferidas para um ambiente mais frio (10 a 20 ° C) sob iluminação contínua a 10.000 lux, elas podem desenvolver manchas foliares verdes a amarelo-cromo em algumas folhas, que às vezes dão um padrão de faixas de veias.

Transmissão para hospedeiros herbáceos
O CYSVd-1 foi relatado como sendo mecanicamente transmissível ao pepino cv. Suyo, que infecta sem sintomas (Semancik, Rivera-Bustamante e Goheen, 1987). Outros viróides da videira são patogênicos para o tomate cv. Rutgers (HSVd, AGVd e CEVd), pepino (HSVd, AGVd, GVd-c) e Gynurnaur aurantiaca (CEVd), nos quais induzem sintomas visíveis.

Eletroforese em gel de poliacrilamida (PAGE) Os bioensaios não são confiáveis, então o PAGE é usado para detecção e identificação provisória de GYSVds e outros viróides de videira. Os procedimentos para extração, concentração e eletroforese são relatados na Parte 111. A identificação é feita com base na mobilidade eletroforética em comparação com a dos viróides de referência de tamanho conhecido (por exemplo, HSVd e CEVd).

Hibridização molecular
Sondas moleculares para viróides de videira foram feitas e se mostraram úteis para identificação específica (Rezaian, Koltunow e Krake, 1988 Semuncik e Szychowski, 1990).

O tratamento térmico não liberta explantes de videira de manchas amarelas. O saneamento é obtido através da regeneração de plântulas de ápices caulinares fragmentados cultivados in vitro a temperaturas entre 20 ° C (noite) e 27 ° C (dia) (Barlass et al., 1982) ou por cultivo de pontas caulinares de 0,1 a 0,2 mm de comprimento em 25 a 27 ° C. O último método também elimina o HSVd (Duran-Vila. Juarez e Arregui, 1 988).

Barlass, M., Skene, K.G.M., Woodham, R.C. & Krake, R.L. 1982. Regeneration of virus free grapevines using in vitro apical culture. Ann. Appl. Biol., 101: 291-295.

Duran-Vila, N., Juarez, J. & Arregui, J.M. 1988. Produção de videiras livres de viróide por cultura de ponta de broto. Sou. J. Enol. Vitic., 39: 217-220.

Flores, R., Duran-Vila, N., Pallas, V. & Semancik, J.S. 1985. Detection of viroid and viroid-like RNA from grapevine. J. Gen. Virol., 66: 20952102.

Goheen, A.C. & Hewitt, W.B. 1962. Vein banding, uma nova doença viral das videiras. Sou. J. Enol. Vitic., 13: 73-77.

Koltunow, A.M. & Rezaian, M.A. 1989. Grapevine viroid 1 B. um novo membro do grupo do viróide da pele da cicatriz da maçã, contém a região terminal esquerda do viróide macho da planta do tomate. Virology, 170: 575-575.

Krake, R.L. & Woodham, R.C. 1983. Grapevine yellow speckle agent implicado na etiologia da doença de formação de faixas nas veias. Vitis, 22: 40-50.

Minafra, A., Martelli, G.P. & Savino, V. 1990. Viroids of grapevines in Italy. Vitis, 29: 173-182.

Mink, G.l. & Parsons, J.L. 1975. Procedimentos de indexação rápida para detectar a doença do manchas amarelas em videiras. Plant Dis. Rep., 59: 869-872.

Puchta, H., Ramm, K. & Sanger, H.L. 1988. Nucleotide sequence of a hop stunt viroid isolate from the German grapevine cultivar "Riesling". Nucl. Acicts Res., 16: 2730.

Rezaian, M.A., Koltunow, A.M. & Krake, L.R. 1988. Isolation of three viroids and a circular RNA from grapevine. J. Gen. Virol., 69: 413422.

Sano, T., Uyeda, I., Shikata, E., Meshi, T., Ohno, T. & Okado, Y. 1985. Um RNA semelhante a um viroide isolado de videira tem alta homologia de sequência com o viroide de stunt de lúpulo. J. Gen. Virol., 66: 333338.

Semancik, J.S., Rivera-Bustamante, R. & Goheen, A.C. 1987. Ocorrência generalizada de ARN semelhante a viroide em videira. Sou. J. Enol. Vitic., 38: 35-40.

Semancik, J.S. & Szychowski, J.A. 1990. Propriedades comparativas de viróides de origem videira isolados de videiras e hospedeiros alternativos. Proc. 10º Encontro. ICVG, Volos, Creece, 1990, p. 270-278.

Szychowski, J., Goheen, A.C. & Semancik, J.S. 1988. Transmissão mecânica e reservatórios de porta-enxertos como fatores na distribuição generalizada de viróides em videiras. Sou. J. Enol. Vitic., 39: 213-216.

Taylor, R.H. & Woodham, R.C. 1972. Grapevine yellow speckle: a recém-reconhecida doença transmissível por enxerto de Vitis. Aust. J. Agric. Res., 23: 447-452.

Resumo: detecção de manchas amarelas

TRANSMISSÃO DE ENXERTO
Indicadores

Vitis vinifera cv. Missão ou LN 33
Nº plantas / teste
3-5 estacas enraizadas
Inóculo
Lascas de madeira, botões individuais
Temperatura
32 ° C por 3 semanas, depois 18-20 ° C (câmara de crescimento). Acima de
25 ° C em campo aberto
Sintomas
Em LN 33, manchas verde-amarelo a amarelo-cromo e / ou faixas de veias
Na missão, manchas amarelas e / ou faixas de veias

OUTROS TESTES
Eletroforese sequencial (sPAGE)
Hibridização molecular

G.P. Martelli

AGENTE CAUSAL

O agente causal é desconhecido.

DISTRIBUIÇÃO GEOGRÁFICA

Embora se saiba que ocorre na Itália desde o início do século (Graniti, Martelli e Lamberti, 1966), a doença enation foi reconhecida como um distúrbio específico por Hewitt (1954) na Califórnia. Ocorre na maioria dos países europeus, Israel, Estados Unidos, Venezuela, África do Sul, Nova Zelândia e Austrália.

Nenhum host alternativo é conhecido.

Os sintomas de campo incluem brotamento retardado, crescimento lento e espesso dos brotos nos estágios iniciais de vegetação e presença de protuberâncias laminares ou em forma de xícara (enações) na parte inferior das oito a dez folhas na base do broto (Figuras 110 e 111). As folhas com enações são deformadas e profundamente lacinadas, e os brotos apresentam deformações variadas e, às vezes, rachaduras nos internódios basais. Os sintomas são erráticos e não se repetem todos os anos nas mesmas videiras.

Nenhum vetor é conhecido. A disseminação é por meio de material propagativo, que perpetua a doença.

Videiras fortemente sintomáticas são facilmente detectadas no campo, mesmo à distância, nos primeiros estágios da vegetação, devido ao crescimento compacto e espesso. Essas trepadeiras geralmente apresentam notáveis ​​foliares que tornam a doença conspícua. A busca de sintomas no verão não é aconselhável porque as videiras retomam seu crescimento e vigor normais, e as folhas com enation são prematuramente perdidas.

O único método disponível é a transmissão do enxerto para o indicador LN 33 (Martelli et al., 1966). A indexação, no entanto, é altamente insatisfatória. O aparecimento dos sintomas é lento (pode levar até três anos) e raramente ultrapassa 20 por cento. Os sintomas consistem no desenvolvimento de enações na parte inferior de algumas folhas do indicador (Figura 112). Os sintomas devem ser lidos quando os brotos têm 15 a 20 cm de comprimento, pois as enações não são mais produzidas no verão e tendem a desaparecer nas folhas que as sustentam.

Nenhuma informação disponível.

Graniti, A., Martelli, G.P. & Lamberti, F. 1966. Enation disease of grapevine in Italy. Proc. Int. Conf: Virus Vectores Perennial Hosts and Vitis, 1965, p. 293-306. Div. Agric. Sci .. Univ. Califórnia, Davis.

Hewitt, W.B. 1954. Alguns vírus e doenças semelhantes a vírus da videira. Calif: Dept. Agric. Bull., 39: 47-64.

Martelli G.P., Graniti, A., Lamberti, F. & Quacquarelli, A. 1966. Trasmissione perinnesto della malattia delle enazioni. Phytopathol. Mediterr., 5: 122-124.

Resumo: detecção de enação

TRANSMISSÃO DE ENXERTO
Indicadores

LN 33 ou Vitis vinifera cv.
Italia
Nº plantas / teste
3-5 estacas enraizadas
Inóculo
Botões individuais, palitos de botões
Temperatura
Condições Fieid
Sintomas
Enations e deformação da folha 1-3 anos após o enxerto

G.P. Martelli

AGENTE CAUSAL

O agente causal da necrose venosa é desconhecido.

DISTRIBUIÇÃO GEOGRÁFICA

A doença foi identificada pela primeira vez na França por Legin e Vuittenez (1973). Atualmente é registrado na maioria dos países europeus e mediterrâneos, onde costuma ter um alto nível de incidência (Credi, Babini e Canova, 1985, Savino, Boscia e Martelli, 1985), e é provável que tenha uma distribuição muito mais ampla.

Nenhum host alternativo é conhecido.

Não há sintomas de campo. A doença está latente em todas as cultivares de videira europeias e na maioria das espécies de porta-enxertos e híbridos americanos.

Nenhum vetor é conhecido. A propagação é através de material de propagação infectado.

Nenhuma detecção de campo é possível devido à falta de sintomas nas vinhas afetadas.

O enxerto é feito para Vitis rupestris x Vitis berlandieri 110 R. Os sintomas consistem em necrose das veias na parte inferior da lâmina foliar (Figura 113). As reações necróticas se desenvolvem primeiro nas folhas na base dos brotos e depois, à medida que os brotos crescem, nas folhas mais novas. Com o tempo, manchas necróticas também aparecem na parte superior da lâmina foliar. Cepas graves podem induzir necrose de gavinhas e morte de brotos verdes. Segue-se uma cessação quase completa do crescimento e o indicador pode morrer. No campo ou estufa, os sintomas aparecem seis a oito semanas após a inoculação, mas cepas leves podem induzir reações positivas um ano após a enxertia. Os sintomas são claramente mostrados, persistem durante toda a estação vegetativa e são prontamente registrados. A leitura dos sintomas deve ser feita oito a dez semanas após a inoculação.

O tratamento térmico a 38 ° C por não menos que 60 dias, a remoção e enraizamento sob névoa das pontas dos brotos de 0,5 cm de comprimento elimina a doença em cerca de 65 por cento dos explantes (Saving, Boscia e Martelli, 1985).

Credi, R., Babini, A.R. & Canova, A. 1985. Ocorrência de necrose da veia da videira na região de Emilia-Romagna (norte da Itália). Phytopathol. Mediterr., 24: 17-23.

Legin, R. & Vuittenez, A. 1973. Comparaison des sintomas e transmissão par greffage d'une mosaíque nervaire de Vitis vinifera, de la marbrure de V. rupestris et d'une afeto necrotique de l'hybride Rup-Ber 110 R. Rile. Patol. Veg., 9 (supl.): 57-63.

Savino, V., Boscia, D. & Martelli, G.P. 1985. Incidência de algumas doenças semelhantes a vírus transmissíveis por enxerto de videira em estoques visualmente selecionados e tratados com calor do sul da Itália. Phytopathol. Mediterr., 24: 204-207.

Resumo: detecção de necrose venosa

TRANSMISSÃO DE ENXERTO
Indicador

Híbrido americano Vitis 110 R
Nº plantas / teste
3-5 estacas enraizadas
Inóculo
Lascas de madeira, botões individuais, palitos de botões, pontas de brotos
Temperatura
26 ° C (enxerto verde)
Sintomas
Necrose das veias, nanismo e necrose das pontas dos caules

G.P. Martelli

Essas doenças são causadas por agentes etiológicos indeterminados, mas possivelmente distintos (Woodham e Krake, 1983). Eles são tratados juntos aqui para fins práticos devido à semelhança de seus sintomas.

O (s) agente (s) causal (s) são desconhecidos. Uma etiologia viróide foi sugerida para manchas de verão devido à influência das altas temperaturas na expressão dos sintomas (Woodham e Krake, 1983).

DISTRIBUIÇÃO GEOGRÁFICA

O mosaico de veias, identificado pela primeira vez na França (Legin e Vuittenez, 1973), é amplamente difundido na Europa e no Mediterrâneo. O mottle de verão foi gravado na Austrália (Krake e Woodham, 1978), mas não se sabe se é ou não restrito a esse país.

Nenhum host alternativo é conhecido.

O mosaico de veias é uma doença semi-latente, pois não aparece de forma consistente nas videiras afetadas, independentemente de serem variedades descendentes europeias ou porta-enxertos americanos. Os sintomas caracterizadores consistem em descoloração verde-claro dos tecidos adjacentes às veias principais, produzindo efeito de penugem ou faixa (Figuras 114 e 115). O tamanho e o vigor das vinhas podem ser adversamente afetados. Os sintomas foliares induzidos por manchas de verão são muito semelhantes. Os sintomas de ambas as doenças aparecem no verão e persistem durante o outono, às vezes, podem ser mais evidentes em vinhas cultivadas em estufas do que no campo.

Nenhum vetor é conhecido. A propagação é através de material de propagação infectado.

A detecção de mosaico de veias em campo nem sempre é possível devido à semilatência da doença. Além disso, quando mostrados, os sintomas podem escapar da observação devido à sua suavidade e distribuição irregular nas vinhas.

O principal indicador de mosaico de veias é a Vitis riparia Gloire de Montpellier, que reage com manchas cloróticas e mosaico verde ao longo das veias (Figura 116), malformações da lâmina foliar e necrose ocasional. Em condições de casa de vegetação, os sintomas aparecem quatro a cinco semanas após a inoculação, atingindo a expressão completa em alguns meses. As respostas sintomáticas podem ser mais lentas no campo, mas geralmente aparecem na vegetação no primeiro ano após a enxertia. LN 33 é outro indicador para mosaico de veias, reagindo com faixas de veias verdes claras a amareladas.

A mancha de verão não induz sintomas em V. riparia ou LN 33 (Woodham e Krake, 1983). Bons indicadores são os cultivares europeus Sideritis, Cabernet franc e Mission, que exibem uma franjinha e estrias de nervuras típicas de verde pálido a amarelado. Os sintomas se desenvolvem tanto na estufa quanto no campo na vegetação do primeiro ano de videiras inoculadas.

A liberdade de manchas de verão foi obtida através da regeneração de trepadeiras de ápices de ramos fragmentados cultivados in vitro a temperaturas entre 20 ° C (noite) e 27 ° C (dia) ou a 35 ° C contínuos (Barlass et al., 1982).

Barlass, M., Skene, K.G.M., Woodham, R.C. & Krake, L.R. 1982. Regeneration of virusfree grapevines using in vitro apical culture. Ann. Appl. Biol., 101: 291-295.

Krake, L.R. & Woodham, R.C. 1978. Grapevine vein mottle, uma nova doença transmissível por enxerto. Vitis, 17: 266-270.

Legin, R. & Vuittenez, A. 1973. Comparaison des sintomas e transmissão par greffage d'une mosaíque nervaire de Vitis vinifera, de la marbrure de V. rupestris et d'une afeto nécrotique des nervures de l'hybride Rup-ber 110 R. Riv. Patol. Veg., 9 (supl.): 57-63.

Woodham, R.C. & Krake, L.R. 1983. Uma comparação das doenças do mosquito do verão da videira e do mosaico das veias. Vitis, 22: 247-252.

Resumo: mosaico de veias e detecção de manchas de verão

TRANSMISSÃO DE ENXERTO
Indicadores

Vitis riparia (mosaico de veias), Vitis vinifera cv. Sidentis,
Cabernet franc (mottle de verão)
Nº plantas / teste
3-5 estacas enraizadas
Inóculo
Lascas de madeira, botões individuais, palitos de botões, pontas de brotos
Temperatura
22 ° C (enxerto verde) ou condições de campo
Sintomas
Manchas cloróticas e mosaico verde ao longo das nervuras, deformação da folha em 4-6 semanas

O agente causal é desconhecido.

DISTRIBUIÇÃO GEOGRÁFICA

O mosaico de asteróides foi identificado pela primeira vez por Hewitt e Goheen (1959) na Califórnia e mais recentemente na Grécia (P.E. Kyriakopoulou, comunicação pessoal).

Nenhum host alternativo é conhecido.

Manchas translúcidas com formato de estrela e nervuras laterais fundidas centradas entre as nervuras primárias da lâmina estão presentes nas folhas. As folhas também são assimétricas e enrugadas (Figura 117). As videiras doentes são fracas e dão pouco ou nenhum fruto.

Nenhum vetor é conhecido. A propagação é através de material de propagação infectado

As vinhas infectadas são sintomáticas e podem ser identificadas no campo.

Quatro a oito semanas após a inoculação do enxerto em Vitis rupestris St George, estreitas faixas amarelo-creme se desenvolvem nas nervuras principais das folhas (Figura 118). As folhas são distorcidas e pequenas (Hewitt et al., 1962).

Nenhuma informação disponível.

Hewitt, W.B. & Goheen, A.C. 1959. Asteroid mosaic of grapevines in California. Phytopathology, 49: 541.

Hewitt, W.B., Goheen, A.C., Raski, D.J. & Gooding, G.V. 1962. Studies on virus and virus-like disease of the grapevine in California. Vitis, 3: 57-83.

Resumo: detecção de mosaico de asteróides

TRANSMISSÃO DE ENXERTO
Indicador
Vitis rupestris São Jorge
Nº plantas / teste
3-5 estacas enraizadas
Inóculo
Lascas de madeira, botões individuais, palitos de botões
Temperatura
Condições de campo
Sintomas
Faixas amarelo-creme ao longo das veias do indicador e deformação da folha em 6-8 semanas

A. Caudwell e G.P. Martelli

Flavescence dorйe (FD) é causada por um organismo semelhante ao micoplasma (MLO)

DISTRIBUIÇÃO GEOGRÁFICA

A doença foi registrada pela primeira vez em 1954 no sudoeste da França (Armagnac), de onde se espalhou para outros distritos vitícolas do sul da França continental, Córsega e norte da Itália (Caudwell e Larrue, 1986) Flavescence dorйe foi aparentemente introduzida na Europa a partir do Grande Área dos lagos dos Estados Unidos, o lar de seu vetor, onde uma doença semelhante ocorre em Vitis vinifera (Caudwell e Dalmasso, 1985, Pearson et al., 1985).

Nenhum hospedeiro natural além da videira é conhecido.

Os sintomas geralmente aparecem no final da primavera. O crescimento pode ser reduzido e os internódios são encurtados. As folhas têm margens enroladas para baixo, e os brotos podem apresentar uma condição caída por causa da maturação irregular da madeira (Figura 119) e falta de fibras no floema. À medida que a estação avança, a gravidade dos sintomas aumenta: o enrolamento das folhas torna-se mais intenso e as lâminas ficam descoloridas, tornando-se amarelas nas cultivares de bagas brancas (Figuras 120 e 121) ou vermelhas nas cultivares de bagas vermelhas (Figuras 122 e 123) . A necrose ao longo das veias principais pode se desenvolver no outono. Os internódios podem apresentar pústulas pretas (Figura 124) e, às vezes, divisão longitudinal da casca. A colheita está muito reduzida. As inflorescências podem ressecar quando os sintomas aparecem pela primeira vez. Se se formarem cachos, os bagos murcham e secam ou caem ao menor movimento da videira. Algumas videiras afetadas morrem, geralmente no ano seguinte à infecção. Os sobreviventes se recuperam naturalmente e não apresentam sintomas, a menos que sejam infectados novamente. As espécies selvagens de Vitis americanas são infectadas sem apresentar sintomas.

A doença é transmitida na natureza por Scaphoides titanus (= Scaphoideus littoralis), uma espécie de cigarrinha estritamente ampelófaga (Figuras 125 e 126) que na Europa se desenvolve no sul da França, Córsega, sul da Suíça e norte da Itália. Esta cigarrinha põe ovos na casca da madeira da uva com dois anos de idade e tem cinco estágios larvais e uma única geração por ano. A disseminação local é efetivamente realizada pelo vetor, enquanto a disseminação a longa distância é feita por meio de material propagativo infectado.

A detecção é baseada na observação de sintomas de campo no verão ou outono.

IDENTIFICAÇÃO
Indexação por transmissão de enxerto

O indicador mais sensível é a variedade híbrida Baco 22A (Noah x Folle blanche). O enxerto de chip-bud e fenda são adequados para inoculação. Os indicadores enxertados mostram sintomas dentro de dois a três meses. Os sintomas são iguais aos apresentados por plantas naturalmente infectadas no campo, ou seja, retardo de crescimento e rolar para baixo e amarelecimento das folhas. Aramon, Chardonnay, Sangiovese e Alicante Bouchet são outras cultivares sensíveis que também podem ser utilizadas como indicadores.

Transmissão por vetores

Adultos e larvas de S. titanus transmitem prontamente o agente da doença para a fava (Vicia faba) cv. Ária em casa de vegetação. As colônias de S. titanus podem ser obtidas colocando-se madeira de poda de uva com dois anos de idade e com ovo, mantida úmida em uma gaiola ao redor de videiras em vegetação (Caudwell e Larrue, 1977). Cigarrinhas (estágio de quarto ou quinto estágio ou adultos) são colocados em brotos de videira infectados por três a quatro semanas e, em seguida, transferidos por uma a duas semanas para mudas jovens (4 a 5 cm de altura) de fava. As favas inoculadas são retiradas da gaiola e cultivadas na estufa com iluminação artificial de 16 horas. Os sintomas que consistem em crescimento reduzido e amarelecimento e enrolamento para cima das folhas acompanhados por aborto floral progressivamente severo (Figura 127) se desenvolvem no topo da planta dentro de duas a três semanas.

Euscelidius variegatus, outra espécie de cigarrinha, pode ser usada para transmitir o agente causal da doença (FD-MLO) da fava para a fava, bem como para outras espécies de plantas, como Vicia, Pisum, Chrysanthernum e Lupines espécies e Vinca rosea. Desde a E. variegatus não se desenvolve em espécies de Vitis, suas colônias são estabelecidas e mantidas em milho (Zea mais) ou fava em condições controladas.

Para minimizar reações não específicas na identificação sorológica de FD-MLO, anti-soros para E. variegatus FD podem ser usados ​​contra extratos de V. faba FD. Por outro lado, anti-soros para V. faba FD podem ser usados ​​contra extratos de cigarrinha FD, isto é, extratos de E. variegatus infectados criados artificialmente ou de S. titanus virulífero coletados de videiras doentes no campo.

ISEM. Grades recentemente carbonatadas são revestidas com uma solução de 10 g / ml de proteína A em tampão fosfato 0,1 M, pH 7,2. Depois de enxaguar no mesmo tampão, as grades são sensibilizadas flutuando em uma gota de anti-soro não diluído para E. variegatus FD, são novamente enxaguadas em tampão e são colocadas em flutuação por 15 minutos em uma gota de extrato de folha de feijão largo infectado contendo 0,05 por cento de Tween 20 Após lavagem completa com tampão de fosfato contendo 0,05 por cento de Tween 20, as grades são fixadas com 1 por cento de glutaraldeído, enxaguadas com água destilada e negativamente coradas com 2 por cento de molibdato de amônio. Em amostras infectadas, os FD-MLOs aparecem como vesículas. Resultados semelhantes são obtidos usando um anti-soro para V.faba FD e extratos de cigarrinhas infectadas.

ELISA. Cigarrinhas individuais são esmagadas em 0,5 ml de tampão PBS e 0,1 ml do extrato é colocado em uma placa bem. Adicionam-se imunoglobulinas de coelho anti-V faba FD. O conjugado é um IgG de cabra anti-coelho. Se extratos de folhas infectadas forem empregados para ELISA, as IgGs usadas são FD anti-leaflhopper de coelho. Ambos os anticorpos policlonais e monoclonais podem ser usados ​​satisfatoriamente em ELISA (Boudon-Padieu e Larrue, 1986 Boudon-Padieu, Larrue e Caudwell, 1989 Schwartz et al., 1989).

A disseminação da doença ocorre por meio de material de propagação infectado e do vetor. A borbulha de videira sem sintomas pode hospedar tanto os ovos do vetor da copa das folhas quanto o agente da doença. Assim, os viveiros devem ser instalados e o material de propagação deve ser coletado em áreas livres da doença ou particularmente bem protegidas contra o vetor. O vetor é controlado por: eliminação de ovos queimando madeira de poda, tratamento antes da explosão do botão com óleos ativados por paration (I 500 ml de uma suspensão de 3 por cento de paration e 78 por cento de óleo de parafina por 100 litros de água) ou uma ou duas aplicações químicas contra ínstares 30 e 45 dias após a primeira eclosão, seguido de outro tratamento contra adultos em agosto.

Os FD-MLOs podem ser eliminados da madeira infectada tratando canas dormentes com água a 45 ° C por 3 horas ou a 50 ° C por 45 minutos (Caudwell et al., 1990).

Boudon-Padieu, E. & Larrue, J. 1986. Diagnostic rapide de la flavescence dorée de la vigne par le test ELISA sur cicadelle vectrice. Aplicação à bola de populações naturelles de Scaphoideus littoralis. Confirmação da presença de la flavescence dorйe dans les Boыches-du-Rhône. Prog. Agric. Vitic., 103: 524-526.

Boudon-Padieu, E., Larrue, J. & Caudwell, A. 1989. ELISA and dot-blot detection of flavescence dorйe-MLO in individual leafhopper vectors during latency and inoculative state. Curr. Microbiol., 19: 357-364.

Caudwell, A. 1964. Identification d'une nouvelle maladie a virus de la vigne, la flavescence dorйe. Etude des phйnomиnes de localisation des symptфmes et de rйtablissement. Ann. Epiphytol. , 15(hors ser. l). 197 pp.

Caudwell, A. & Dalmasso, A. 1985. Epidemiology and vectors of grapevine viruses and yellows diseases. Phytopathol. Mediterr., 24: 170-176.

Caudwell, A. & Larrue, J. 1977. La production de cicadelles seines et infectieuses pour les йpreuves d'infectivitй chez les jaunisses a mollicutes des vйgйtaux. L'йlevage de Euscelis plebeja KBM et la ponte sur mousse de polyurethane. Ann. Zool. Ecol. Anim., 9: 443456.

Caudwell, A. & Larrue, J. 1986. La flavescence dorйe dans le midi de la France et dans le Bas-Rhone. Prog. Agric. Vitic., 103: 517-523.

Caudwell, A., Larrue, J., Volos, C. & Grenan, S. 1990. Hot water treatment against flavescence dorйe on dormant wood. Proc. 10th Meet. ICVG, Volos, Greece, 1990, p. 336-343.

Pearson, R.C., Pool, R.M., Gonsalves, D. & Goffinet, M.C. 1985. Occurrence of flavescence dorйe-like symptoms on "White Riesling" grapevines in New York, USA. Phytopathol. Mediterr., 24: 8287.

Schwartz, Y., Boudon-Padieu, E., Grange, J., Meignoz, R. & Caudwell, A. 1989. Obtention d'anticorps monoclonaux spйcifiques de ['agent pathogиne de type mycoplasme (MLO) de la flavescence dorйe de la vigne. Ann. Inst. Pasteur Res. Microbiol., 140: 311 -324.

Summary: flavescence dorйe detection

GRAFT TRANSMISSION
Indicators

Hybrid Baco 22A Vitis vinifera cvs Chardonnay, Aramon
No. plants/test
3-5 rooted cuttings
Inoculum
Wood chips, single buds, bud sticks
Temperature
Field conditions
Symptoms
Stunting, leaf yellowing and necrosis (white-berried varieties) or leaf reddening and necrosis (red-berried varieties) 2-3 months or more after inoculation

OTHER TESTS
Serology (ELISA)
Molecular hybridization

G.P. Martelli and A. Caudwell

The causal agent of grapevine yellows (bois noir, Vergilbungkrankheit, etc.) is unknown, but it is thought to be a mycoplasma-like organism (MLO). Whether one or more different MLOs are involved in the aetiology of the disease is not known.

GEOGRAPHICAL DISTRIBUTION

Syndromes comparable to bois noir, one of the grapevine yellows originally reported from France (Caudwell, 1961), have been recorded from many European and Mediterranean countries (Germany, Switzerland, southern Italy, Romania, Yugoslavia, Greece, Israel). Similar diseases occur also in Chile, Argentina and Australia (see Caudwell, 1988). Whether and to what extent these diseases are related to one another has not been established.

No alternate hosts are known, although they are likely to exist in native flora (weeds and shrubs).

Symptoms are practically the same as those of flavescence dorйe, i.e. leaf rolling, yellowing or reddening of the leaves, necrosis along the veins, incomplete wood ripening, withering of berries and drying up of bunches (Figures 128 to 131).

Visual evidence strongly indicates that the disease spreads naturally in the field. Vectors are not yet known but are likely to be leafhoppers.

Infected vines are readily identified because of the symptoms shown, especially in summer, which is the best time for field surveys.

Although cv. Chardonnay is a sensitive indicator for certain of these diseases (e.g. bois noir), it may not be totally dependable for others. Vines can be infected by grafting but not by Scaphoideus titanus. The symptomatological reactions of cv. Chardonnay tally with field symptoms. Serological tests are not available.

No information is available.

Caudwell, A. 1961. Etude sur la maladie du bois noir de la vigne: ses rapports avec la flavescence dorйe. Ann. Epiphytol., 12: 241262.

Caudwell, A. 1988. Bois noir and Vergilbungkrankheit. Other grapevine yellows. In R.C. Pearson and A.C. Coheen, eds, Compendium of grape diseases, p. 46-47. St Paul, MN, USA, Am. Phytopathol. Soc.

Summary: yellows detection

GRAFT TRANSMISSION
Indicator

Vitis vinifera cv. Chardonnay
No. plants/test
3-5 rooted cuttings
Inoculum
Wood chips, single buds, bud sticks
Temperature
Field conditions
Symptoms
Yellowing or reddening of the leaves and rolling of the lades followed by necrosis of the veins, usually within the first year after inoculation


Doenças

Vírus of grapes such as leaf roll and red blotch can also cause red leaves and result in reduced vine vigor, poor fruit set, reduced fruit quality, and early decline of vines. Since there is no cure available for viruses once vines are infected, the only way to cure the infected vineyard is rogueing out infected vines, and replanting with virus-tested planting materials from dependable nurseries. 3

Figure 7. Grapevine red blotch disease symptoms on Merlot. Note red pigment appearing randomly on leaf. Reddening from edges can be mistaken for K deficiency and rolling or curling at edge can be mistaken for leaf roll virus symptoms.

Grapevine leafroll disease symptoms typically appear around the onset of fruit ripening and spread as the season progresses. In red varieties, red to purplish discoloration is observed on interveinal areas of the leaf, but the veins stay green (Figure 4). In white varieties, the interveinal area will become pale green while the veins turn yellowish (Figure 5). In addition, downward cupping or curling from the edges is typical of leafroll symptoms (Figure 5). The discoloration of leaves will often develop randomly within the vine canopy. An upward or downward movement of the discoloration will not occur as it does with some of the nutrient deficiencies.

There are several viruses that can cause grapevine leafroll disease, and grapevine leafroll-associated virus-1 and -3 (GLRaV-1 and -3) can be disseminated by mealybugs or scale insects (Figure 6). Scouting for these vector insects can be done during the season (around bloom) by carefully examining the basal area of shoots and underneath the bark. Mealybugs can be managed through insecticide treatment(s), however recent research showed that even a small population of mealybugs could quickly spread grapevine leafroll disease.

Figure 8. Crown gall symptom at the graft union.

Grapevine red blotch disease is a recently recognized virus that has existed for a long time. As the name suggests, blotches of red pigment appear randomly on leaves of infected vines. It can be detected at any stage of vine growth in any part of a vine. It can easily be mistaken for potassium deficiency or leaf roll virus, especially when leaves cup or roll (Figure 7). Because of the recent recognition of the virus, there are ongoing efforts to understand how (or if) it spreads in vineyards. It is known that the red blotch virus can be disseminated through propagation and grafting with infected materials.

For the two viruses mentioned above and any other viruses, the vines will always be infected. Thus, it is recommended to obtain virus-tested materials from reputable nurseries when establishing a vineyard. Confirm that the nursery has virus-testing procedures in place such as Protocol 2010. 4 The materials from Protocol 2010 have been available since 2013, and availability has increased as more nurseries have adapted the protocol.

If you have propagated your planting materials from existing vineyards, or obtained materials from non-certified nurseries, consider sending a representative number of cuttings for virus-testing before planting. Typically, 7–8 young, matured leaves per vine, and 30–50 leaves per sample are sufficient, but communicate with the virus-testing lab (listed below) for their specific sampling protocol. When one of the vector insects and one of the grapevine leafroll-associated viruses (GRLaV-1 or -3) are present in your vineyard, management of the vector insect will be required to keep healthy vines clean of GLRaV.

Figure 9. A series of small crown gall formed under the bark of Merlot.

Crown Gall is caused by a bacterium Rhizobium ( = Agrobacterium) vitis and can be common in cool climates. Severe winters or temperature fluctuations in the early spring damage bark and vascular tissues and allow R. vitis to move into the vine cells and cause infection. 5 Typical symptoms are formation of galls on the trunk (Figure 8) however, these galls can be very small, and may be formed under the bark (Figure 9). Therefore, crown gall could be mistakenly identified as a nutrient deficiency, as red leaves resulting from the stressed vascular system are readily visible (Figure 10). Other wounding events, such as physical damage to the trunk by hitting it with equipment such as line trimmers, can also encourage the infection by R. vitis.

As with virus diseases, crown gall-infected vines are infected for life because crown gall bacterium is a systemic pathogen. Thus, management of crown gall is very difficult. Obtain clean plant materials (note: the procedure used in Protocol 2010 should considerably reduce the risk of R. vitis from the mother plant), and make sure to select varieties that suit your site. Cold tender varieties, such as Merlot and Tanat tend to have higher risk of crown gall than many others do. Moreover, stressed vines tend to be more cold tender, thus, proper viticultural practices such as site selection, crop load, and foliar disease management can lower the risk of crown gall. Having multiple trunks from above the graft union and hilling up to cover the graft unions during the winter months are other preventative strategies.


3. Downy Mildew (Plasmopara viticola)

This fungi vine disease can destroy grapes and vine vegetation. Between mid-May and late autumn, the aerial parts of the plant can become infected, particularly when the temperature is below 65°F. The symptoms are oil spots and a moldy cover or bright green spots found on the leaves. A white moldy cover is also found on the shoots and the inflorescences. The infection can also reach the berries, particularly the thriving ones, and cause them to dry out and look like raisins. They may also soften and turn a violet-brown color.

Chemical applications, such as fungicides, are used to control the fungus. Also, measures are taken to eliminate humidity and moisture around impacted plants. Drip watering systems and selective pruning to improve air circulation help to do this. Enclosed environments, such as houses or greenhouses, aid in reducing humidity and thus reducing the chance of this mildew from harming the grapevines.


Grape Leafroll Disease

Grape leafroll disease is more prevalent in vineyards than home plantings, but can have devastating effects, including the loss of 30 to 50 percent of yields. On red grape varieties, the leaves turn red. On white varieties, the leaves turn yellow. Both varieties exhibit cupping or downward turning of the leaves. The veins remain green. No chemical controls exist for leafroll disease, although treating aphids and scales through the use of pesticides may limit the spread of the disease. Plant certified disease-free plants and remove and destroy any infected plants.

  • Grape leafroll disease is more prevalent in vineyards than home plantings, but can have devastating effects, including the loss of 30 to 50 percent of yields.
  • On red grape varieties, the leaves turn red.

Questions & Answers

Pergunta: I've tried leaving the yellow leaves on my large-leaf philodendron for several weeks now. As soon as I remove them, a new one turns yellow, as if there is some poison that needs to come out of the plant. This is also happening with my arrowhead plant. What is the cause?

Responder: If the plants in question are actively growing, they may simply be letting go of the least productive leaf on the plant to provide resources for new growth. If these plants are struggling it is likely an issue of too little light, or it is consistently getting too dry between watering.

Pergunta: I applied a thin coat of vaseline on both sides of a leaf. After a few days, the leaf became yellow and fell off. Why does this happen?

Responder: Vaseline is a dense petroleum product that will severely affect transpiration if applied to foliage. If shining the leaves is the objective an actual leaf shine product is recommended, preferably one that is water soluble.

Pergunta: If my corn plant has been overwatered, how long should I wait to water again?

Responder: Water the plant again when the soil moisture is minimal throughout most of the pot. In order to effectively check this, you may need to get a soil probe.

Pergunta: What could cause muted yellow spots on green leaves of cane tree ?

Responder: Yellow or Rust-colored spots on the leaves of an otherwise healthy Dracaena can be caused by a build-up of soluble minerals in the soil this is common in older plants. It is helpful to add new soil to your plants grow pot. Check for roots that may be protruding through the drain holes on the grow pot, if any are found cut them back to the pot.

Pergunta: My bamboo plant has only lived in water. Why are its leaves turning yellow?

Responder: If a plant has been grown and maintained hydroponically (in water), yellowing can be caused quickly by a lack of nutrient since no soil is available. If the “Bamboo” plant in question is a Lucky Bamboo, or a Bamboo Palm, another consideration would be Spider Mite. A Spider Mite infestation will cause yellow leaves and is common to both plants mentioned above.


Assista o vídeo: Na Prática - Plantio da Videira